Johnny Bonnardel

This protocol describes a mouse model of Candida albicans oral colonization that establishes stable, long‐term fungal persistence in the oral cavity, thereby recapitulating key features of human commensal colonization, including the induction of sustained adaptive antifungal immunity. The model enables the analysis of host‐fungal interactions across multiple experimental readouts. Procedures are provided for isolation of single‐cell suspensions from the whole tongue, the tongue epithelium, and the draining lymph nodes for flow cytometric analysis, supporting both enumeration and extended functional characterization of immune cell populations. Antigen‐specific T cell responses can be assessed by re‐stimulation of isolated T cells with C. albicans ‐pulsed dendritic cells prior to staining and analysis. Additional methods include quantification of fungal burden in tongue tissue, histological assessment of fungal localization and immune cell infiltration, and isolation of high‐quality RNA using an optimized extraction workflow compatible with RT‐qPCR and RNA sequencing. Collectively, these protocols provide a flexible and integrated platform for studying immune responses and host‐fungal interactions during persistent oral colonization. © 2026 The Author(s). Current Protocols published by Wiley Periodicals LLC. Basic Protocol 1 : Oral colonization of mice with Candida albicans Basic Protocol 2 : Preparation of single‐cell suspensions from the murine whole tongue, tongue epithelium, and draining lymph nodes Basic Protocol 3 : Re‐stimulation of cLNs and tongue T cells for qualitative and quantitative assessment of T cell effector functions Basic Protocol 4 : Flow‐cytometry‐based analysis of tongue immune cell populations Support Protocol 1 : Evaluation of fungal burden in the tongue of C. albicans ‐colonized mice Support Protocol 2 : Visualization of tissue integrity, tissue inflammation, and fungal localization by histology Support Protocol 3 : Extraction of total RNA from the tongue of C. albicans ‐colonized mice for RNA sequencing and RT‐qPCR

Les plaques de Peyer (PP) sont les principaux sites inducteurs de la réponse immunitaire mucosale.L’épithélium associé aux follicules comprend des cellules épithéliales spécifiques, appelées cellules M et spécialisées dans le transport du matériel présent dans la lumière intestinale vers le dôme sous épithélial (SED) où il sera pris en charge par les cellules du système phagocytaire mononuclée (MPS) qui orchestreront ensuite les réponses immunitaires mucosales.Nous avons effectué une analyse complète du phénotype, de la distribution, de l’ontogénie, de la fonction et des profils transcriptomiques du MPS des PP. Nous avons montré que les monocytes donnent naissance à deux populations: les lysoDC et les lysoMac. La première exprime de fort niveau de CMH-II et de molécules de costimulation, a une courte durée de vie et est capable d’activer les lymphocytes T naïfs pour sécréter de l’IFNγ tandis que la deuxième exprime faiblement le CMH-II, à une longue durée de vie et n’est pas capable d’activer les LT naïfs. Ces deux populations ont toutefois des propriétés communes de phagocytose et de défense innée contre les virus et les bactéries entéropathogènes. Nous avons identifié deux populations distinctes de lysoMac selon l’expression de Tim4: les lysoMac Tim4+ situés dans l’IFR et la partie inférieure du follicule ; les lysoMac Tim4- situés dans le SED et la partie supérieure du follicule. Nous avons aussi déterminé 4 états de maturation pour les lysoDC suivant l’expression d’Emb, Jam-A et CD24. Nous avons également redéfini la localisation de chaque population du MPS des PP fournissant ainsi une base solide pour étudier le rôle de chacun de ses membres dans l’immunité mucosale.