Pulu Sun
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Research Subjects
Research Interests
Pulu Sun has a total of 44 co-authors. Here are the top co-authors by number of shared publications:
- Robert. C. Schuurink
Green Life Sciences Research Cluster, Swammerdam Institute for Life Sciences, University of Amsterdam, Amsterdam, The Netherlands
3 shared publications - Fabrice Foucher
INRA, Institut de Recherche en Horticulture et Semences (INRA, Agrocampus-Ouest, Université d’Angers)
2 shared publications - Jean-Claude Caissard
Université Jean Monnet Saint-Etienne, Centre National de la Recherche Scientifique, Laboratoire de Biotechnologies Végétales appliquées aux Plantes Aromatiques et Médicinales, Unité Mixte de Recherche 5079, Saint-Etienne F-42023, France
2 shared publications - Laurence Hibrand-Saint Oyant
IRHS-GDO - IRHS - Équipe GDO (Génétique et Diversité des plantes Ornementales) (Institut Agro Agrocampus Ouest, UMR1345 IRHS, F-49045 Angers, France - France)
2 shared publications - Sylvie Baudino
Université Jean Monnet Saint-Etienne , CNRS, LBVpam UMR 5079, F-42023, Saint-Etienne
2 shared publications A. Rius-Bony
1 shared publication
Latest Publications
- 2 April 2026
- Published by Agence Bibliographique de l'Enseignement Supérieur
Molecular and biochemical studies of fragrance biosynthesis in rose
Etude de gènes impliqués dans la biosynthèse du parfum chez la rose, Rosa x hybrida: La rose est l'une des plantes ornementales les plus populaires, dont les composés volatils sont non seulement impliqués dans les interactions des fleurs avec l’environnement au sens large, mais aussi largement utilisés dans l’industrie des arômes et parfums. Le chapitre 1 décrit l'histoire de la culture de la rose, les usages de son parfum, les connaissances actuelles sur la biosynthèse des composés de ce parfum, ainsi que les voies de biosynthèse des composés volatils qui ont été récemment élucidées chez différentes plantes. Les chapitres expérimentaux 2 et 3 analysent les fonctions de deux gènes exprimés dans les pétales de rose. Ils codent pour des protéines Nudix hydrolase 1 (NUDX1). Le gène NUDX1-1 (nommé RhNUDX1 dans la publication) a été découvert en comparant les transcriptomes de deux cultivars de rose, Rosa x hybrida cv. 'Papa Meilland' (PM) très parfumé et R. x hybrida cv. 'Rouge Meilland' (RM), dépourvu de parfum. Le gène RhNUDX1-1 n'est exprimé que chez PM et son expression est corrélée avec la production de monoterpènes dans les pétales, en particulier de géraniol. Lors de l'étude d'une descendance issue du croisement de R. chinensis cv. ‘Old Blush’ (OB) et de R. x wichurana (Rw), le gène orthologue RcNUDX1-1a, présentant la même fonction, a été caractérisé chez OB. Un gène paralogue, RwNUDX1-2, a été découvert chez Rw et il a été démontré que son expression présentait une corrélation avec la production sesquiterpènes, en particulier de E,E-farnesol. Une série d'analyses in vitro et in vivo ainsi qu'une analyse de corrélation ont permis de vérifier la fonction de RhNUDX1-1, qui hydrolyse le géranyl diphosphate (GPP) en géranyl monophosphate (GP). Une phosphatase non identifiée pourrait catalyser la transformation du GP en géraniol. Des expériences de fusion avec la Green Fluorescent Protein (GFP), suivies de transformation transitoire de feuilles de tabac, ont révélé que RhNUDX1-1 était localisée dans le cytoplasme. Les mêmes approches (analyses QTL, essais enzymatiques et expression transitoire) ont également été appliquées à RwNUDX1-2, démontrant sa fonction dans la production de E,E-farnesol. La cartographie de RwNUDX1-2 et la localisation subcellulaire de la protéine sont encore à l'étude. De plus, la cristallographie des protéines et la modélisation ont été employées pour étudier le mécanisme de l'interaction NUDX1-substrat et les acides aminés potentiellement importants pour la reconnaissance du substrat. Collectivement, ces données révèlent une voie alternative pour la biosynthèse des terpènes, en particulier le géraniol et E,E-farnesol, via l'hydrolyse des prényl diphosphates par les enzymes NUDX1. Nos résultats montrent que la production de composés volatils dans les pétales est fortement corrélée avec l’expression des gènes des voies de biosynthèse. Par conséquent, la régulation transcriptionnelle de RcNUDX1-1a et RwNUDX1-2 joue probablement un rôle important dans la production de parfum. Les promoteurs de RcNUDX1-1a, RcNUDX1-1b, et RwNUDX1-2 et deux facteurs de transcription (FT), RcbHLH79 (OB TF) et RwbHLH79 (Rw TF) ont ainsi été isolés et testés (Chapitre 4). Les FT candidats ont été choisis lors d’une analyse RNA-Seq (Chapitre 5). En utilisant des tests d'expression transitoire avec le gène rapporteur GUS (β-glucuronidase) dans les pétales de rose, il a été montré que les trois promoteurs pouvaient entraîner l'expression de GUS. Les deux FT ont ensuite été introduits dans des feuilles de tabac avec les promoteurs testés, pour voir s'ils étaient capables d'activer ces promoteurs. Aucune transactivation significative n'a été détectée, même si Rw TF semblait pouvoir activer une construction témoin (promoteur du gène de la tomate TPS5. Les transcriptomes de quatre cultivars de rose, dont deux produisent du géraniol mais pas de E,E-farnesol et deux autres produisent du E,E-farnesol mais pas de géraniol, ont été analysés (Chapitre 5) et ont abouti à une liste de FT putatifs pour une étude plus approfondie
- 2 April 2026
- Published by Agence Bibliographique de l'Enseignement Supérieur
Molecular and biochemical studies of fragrance biosynthesis in rose
Etude de gènes impliqués dans la biosynthèse du parfum chez la rose, Rosa x hybrida: La rose est l'une des plantes ornementales les plus populaires, dont les composés volatils sont non seulement impliqués dans les interactions des fleurs avec l’environnement au sens large, mais aussi largement utilisés dans l’industrie des arômes et parfums. Le chapitre 1 décrit l'histoire de la culture de la rose, les usages de son parfum, les connaissances actuelles sur la biosynthèse des composés de ce parfum, ainsi que les voies de biosynthèse des composés volatils qui ont été récemment élucidées chez différentes plantes. Les chapitres expérimentaux 2 et 3 analysent les fonctions de deux gènes exprimés dans les pétales de rose. Ils codent pour des protéines Nudix hydrolase 1 (NUDX1). Le gène NUDX1-1 (nommé RhNUDX1 dans la publication) a été découvert en comparant les transcriptomes de deux cultivars de rose, Rosa x hybrida cv. 'Papa Meilland' (PM) très parfumé et R. x hybrida cv. 'Rouge Meilland' (RM), dépourvu de parfum. Le gène RhNUDX1-1 n'est exprimé que chez PM et son expression est corrélée avec la production de monoterpènes dans les pétales, en particulier de géraniol. Lors de l'étude d'une descendance issue du croisement de R. chinensis cv. ‘Old Blush’ (OB) et de R. x wichurana (Rw), le gène orthologue RcNUDX1-1a, présentant la même fonction, a été caractérisé chez OB. Un gène paralogue, RwNUDX1-2, a été découvert chez Rw et il a été démontré que son expression présentait une corrélation avec la production sesquiterpènes, en particulier de E,E-farnesol. Une série d'analyses in vitro et in vivo ainsi qu'une analyse de corrélation ont permis de vérifier la fonction de RhNUDX1-1, qui hydrolyse le géranyl diphosphate (GPP) en géranyl monophosphate (GP). Une phosphatase non identifiée pourrait catalyser la transformation du GP en géraniol. Des expériences de fusion avec la Green Fluorescent Protein (GFP), suivies de transformation transitoire de feuilles de tabac, ont révélé que RhNUDX1-1 était localisée dans le cytoplasme. Les mêmes approches (analyses QTL, essais enzymatiques et expression transitoire) ont également été appliquées à RwNUDX1-2, démontrant sa fonction dans la production de E,E-farnesol. La cartographie de RwNUDX1-2 et la localisation subcellulaire de la protéine sont encore à l'étude. De plus, la cristallographie des protéines et la modélisation ont été employées pour étudier le mécanisme de l'interaction NUDX1-substrat et les acides aminés potentiellement importants pour la reconnaissance du substrat. Collectivement, ces données révèlent une voie alternative pour la biosynthèse des terpènes, en particulier le géraniol et E,E-farnesol, via l'hydrolyse des prényl diphosphates par les enzymes NUDX1. Nos résultats montrent que la production de composés volatils dans les pétales est fortement corrélée avec l’expression des gènes des voies de biosynthèse. Par conséquent, la régulation transcriptionnelle de RcNUDX1-1a et RwNUDX1-2 joue probablement un rôle important dans la production de parfum. Les promoteurs de RcNUDX1-1a, RcNUDX1-1b, et RwNUDX1-2 et deux facteurs de transcription (FT), RcbHLH79 (OB TF) et RwbHLH79 (Rw TF) ont ainsi été isolés et testés (Chapitre 4). Les FT candidats ont été choisis lors d’une analyse RNA-Seq (Chapitre 5). En utilisant des tests d'expression transitoire avec le gène rapporteur GUS (β-glucuronidase) dans les pétales de rose, il a été montré que les trois promoteurs pouvaient entraîner l'expression de GUS. Les deux FT ont ensuite été introduits dans des feuilles de tabac avec les promoteurs testés, pour voir s'ils étaient capables d'activer ces promoteurs. Aucune transactivation significative n'a été détectée, même si Rw TF semblait pouvoir activer une construction témoin (promoteur du gène de la tomate TPS5. Les transcriptomes de quatre cultivars de rose, dont deux produisent du géraniol mais pas de E,E-farnesol et deux autres produisent du E,E-farnesol mais pas de géraniol, ont été analysés (Chapitre 5) et ont abouti à une liste de FT putatifs pour une étude plus approfondie
- 1 May 2023
- Published by International Society for Horticultural Science (ISHS) in Acta Horticulturae
- No. 1368,p. 361-370
Evolution of scent genes in roses
ISHS XXXI International Horticultural Congress (IHC2022): International Symposium on Innovations in Ornamentals: from Breeding to Market Evolution of scent genes in roses
- 1 May 2023
- Published by International Society for Horticultural Science (ISHS) in Acta Horticulturae
- No. 1368,p. 361-370
Evolution of scent genes in roses
ISHS XXXI International Horticultural Congress (IHC2022): International Symposium on Innovations in Ornamentals: from Breeding to Market Evolution of scent genes in roses
- 8 July 2020
- Published by Wiley in The Plant Journal
- Vol. 104 (1) , 185-199
Functional diversification in the Nudix hydrolase gene family drives sesquiterpene biosynthesis in Rosa × wichurana
SUMMARY: Roses use a non‐canonical pathway involving a Nudix hydrolase, RhNUDX1, to synthesize their monoterpenes, especially geraniol. Here we report the characterization of another expressed NUDX1 gene from the rose cultivar Rosa x wichurana, RwNUDX1‐2. In order to study the function of the RwNUDX1‐2 protein, we analyzed the volatile profiles of an F1 progeny generated by crossing R. chinensis cv. ‘Old Blush’ with R. x wichurana. A correlation test of the volatilomes with gene expression data revealed that RwNUDX1‐2 is involved in the biosynthesis of a group of sesquiterpenoids, especially E,E‐farnesol, in addition to other sesquiterpenes. In vitro enzyme assays and heterologous in planta functional characterization of the RwNUDX1‐2 gene corroborated this result. A quantitative trait locus (QTL) analysis was performed using the data of E,E‐farnesol contents in the progeny and a genetic map was constructed based on gene markers. The RwNUDX1‐2 gene co‐localized with the QTL for E,E‐farnesol content, thereby confirming its function in sesquiterpenoid biosynthesis in R. x wichurana. Finally, in order to understand the structural bases for the substrate specificity of rose NUDX proteins, the RhNUDX1 protein was crystallized, and its structure was refined to 1.7 Å. By molecular modeling of different rose NUDX1 protein complexes with their respective substrates, a structural basis for substrate discrimination by rose NUDX1 proteins is proposed.
- 8 July 2020
- Published by Wiley in The Plant Journal
- Vol. 104 (1) , 185-199
Functional diversification in the Nudix hydrolase gene family drives sesquiterpene biosynthesis in Rosa × wichurana
SUMMARY: Roses use a non‐canonical pathway involving a Nudix hydrolase, RhNUDX1, to synthesize their monoterpenes, especially geraniol. Here we report the characterization of another expressed NUDX1 gene from the rose cultivar Rosa x wichurana, RwNUDX1‐2. In order to study the function of the RwNUDX1‐2 protein, we analyzed the volatile profiles of an F1 progeny generated by crossing R. chinensis cv. ‘Old Blush’ with R. x wichurana. A correlation test of the volatilomes with gene expression data revealed that RwNUDX1‐2 is involved in the biosynthesis of a group of sesquiterpenoids, especially E,E‐farnesol, in addition to other sesquiterpenes. In vitro enzyme assays and heterologous in planta functional characterization of the RwNUDX1‐2 gene corroborated this result. A quantitative trait locus (QTL) analysis was performed using the data of E,E‐farnesol contents in the progeny and a genetic map was constructed based on gene markers. The RwNUDX1‐2 gene co‐localized with the QTL for E,E‐farnesol content, thereby confirming its function in sesquiterpenoid biosynthesis in R. x wichurana. Finally, in order to understand the structural bases for the substrate specificity of rose NUDX proteins, the RhNUDX1 protein was crystallized, and its structure was refined to 1.7 Å. By molecular modeling of different rose NUDX1 protein complexes with their respective substrates, a structural basis for substrate discrimination by rose NUDX1 proteins is proposed.
- Open Access
- 2 December 2019
- Published by Wiley in New Phytologist
- Vol. 229 (1) , 140-155
Keeping the shoot above water – submergence triggers antithetical growth responses in stems and petioles of watercress (Nasturtium officinale)
Summary: The molecular mechanisms controlling underwater elongation are based extensively on studies on internode elongation in the monocot rice (Oryza sativa) and petiole elongation in Rumex rosette species. Here, we characterize underwater growth in the dicot Nasturtium officinale (watercress), a wild species of the Brassicaceae family, in which submergence enhances stem elongation and suppresses petiole growth. We used a genome‐wide transcriptome analysis to identify the molecular mechanisms underlying the observed antithetical growth responses. Though submergence caused a substantial reconfiguration of the petiole and stem transcriptome, only little qualitative differences were observed between both tissues. A core submergence response included hormonal regulation and metabolic readjustment for energy conservation, whereas tissue‐specific responses were associated with defense, photosynthesis, and cell wall polysaccharides. Transcriptomic and physiological characterization suggested that the established ethylene, abscisic acid (ABA), and GA growth regulatory module for underwater elongation could not fully explain underwater growth in watercress. Petiole growth suppression is likely attributed to a cell cycle arrest. Underwater stem elongation is driven by an early decline in ABA and is not primarily mediated by ethylene or GA. An enhanced stem elongation observed in the night period was not linked to hypoxia and suggests an involvement of circadian regulation.
- 2 December 2019
- Published by Wiley in New Phytologist
- Vol. 229 (1) , 140-155
Open AccessKeeping the shoot above water – submergence triggers antithetical growth responses in stems and petioles of watercress (Nasturtium officinale)
Summary: The molecular mechanisms controlling underwater elongation are based extensively on studies on internode elongation in the monocot rice (Oryza sativa) and petiole elongation in Rumex rosette species. Here, we characterize underwater growth in the dicot Nasturtium officinale (watercress), a wild species of the Brassicaceae family, in which submergence enhances stem elongation and suppresses petiole growth. We used a genome‐wide transcriptome analysis to identify the molecular mechanisms underlying the observed antithetical growth responses. Though submergence caused a substantial reconfiguration of the petiole and stem transcriptome, only little qualitative differences were observed between both tissues. A core submergence response included hormonal regulation and metabolic readjustment for energy conservation, whereas tissue‐specific responses were associated with defense, photosynthesis, and cell wall polysaccharides. Transcriptomic and physiological characterization suggested that the established ethylene, abscisic acid (ABA), and GA growth regulatory module for underwater elongation could not fully explain underwater growth in watercress. Petiole growth suppression is likely attributed to a cell cycle arrest. Underwater stem elongation is driven by an early decline in ABA and is not primarily mediated by ethylene or GA. An enhanced stem elongation observed in the night period was not linked to hypoxia and suggests an involvement of circadian regulation.